Einführung
Eine der größten und am schnellsten wachsenden Industrien der Welt ist die Hühnerindustrie, und die Fülle an pathogenen Mikroorganismen erschwert die praktische Handhabung und führt zu großen finanziellen Verlusten (Anwar et al., 2017). Hefezellwandglukane (YCW) werden in Hühnerfutter verwendet, um die oben genannten Einschränkungen zu überwinden. Die Nahrung, die β-Glucane enthält, kann die Wachstumsleistung verbessern (Cho et al., 2013), die Makrophagen-Phagozytose nach einer bakteriellen Infektion fördern (Chen et al., 2008) und die Schwere einer Infektion mit Darmpathogenen verringern (Huff et al., 2006; Shao et al., 2013).
Selbst bei niedrigen Dosen akzeptieren Verbraucher im Allgemeinen, dass der Einsatz von Hefe-Glucanen vorteilhafter ist als der Einsatz von Antibiotika (Moon et al., 2016). Beta-Glucane aus der Zellwand von Hefen und Pilzen fördern sowohl spezifische als auch unspezifische Immunantworten und steigern die Wachstumsleistung von Hühnern (Vetvicka und Vetvickova, 2014; Rajapakse et al., 2010) sowie die Fleischqualität. Die Verwendung von Geflügelfuttermitteln, ergänzt mit (β-1,3) (β-1,6)-Glucanen aus Hefe und Pilzen, hat sehr nützliche Wirkungen (Stier et al., 2014).
Stärken Sie die Immunität
Sowohl das adaptive Immunsystem als auch die natürlichen Killerzellen, die den Wirt vor Virusinfektionen schützen, werden üblicherweise von Lymphozyten abgeleitet. Jüngsten Forschungsergebnissen zufolge könnte die Zugabe von β-Glucan zu Hühnern den Einsatz von Antibiotika verringern oder möglicherweise ganz ersetzen (Ding et al., 2019). Es ist also wahr, dass die Makrophagenfunktion auf β-Glucane aus der Nahrung reagiert, und es wurde gezeigt, dass die phagozytische Aktivität von Broilerküken mit der Nahrungsergänzung von β-Glucanen aus der Hefe zunimmt Saccharomyces cerevisiae (Guo et al., 2003).
Erhöhen Sie die Widerstandsfähigkeit gegen Krankheitserreger
Das Immunsystem ist das Abwehrsystem des Wirts, das ihn vor Krankheiten schützt. Hefe-β-Glucane spielen eine wichtige Rolle bei der Aktivierung sowohl des angeborenen als auch des adaptiven Immunsystems. Es wurde gezeigt, dass die Zugabe von Hefe-β-Glucanen zur Ernährung von Masthühnern die phagozytische Aktivität von Makrophagen erhöht (Guo et al., 2013; Lowry et al., 2005), was darauf hindeutet, dass Hefe-β-Glucane für die Aktivierung beider entscheidend sein könnten das angeborene und adaptive Immunsystem dieser Tiere. Ein wichtiges Element des unspezifischen Immunsystems, das sie stimulieren, ist der Makrophage. Darüber hinaus wachsen die lymphoiden Organe, also die Organe, die Lymphozyten bilden, größer, wenn Hefe-β-Glucan zur Broiler-Hühnernahrung hinzugefügt wird (Guo et al., 2013).
Wachstumssteigerung und Leistung
Der Nahrungsergänzungsmittel mit Hefe-β-Glucan verbessert das Wachstum, indem es ihnen hilft, während der Wachstumsphase von Broilern an Körpergewicht zuzunehmen (Cox et al. 2010b). Es verbessert auch die Verdauung von Broilern, was zur Steigerung der Wachstumsleistung beiträgt. Es hilft bei der relativen Vergrößerung und dem Gewicht verschiedener Organe wie Milz, Bursa Fabricius und Thymusdrüse. Es hilft auch bei der Vermehrung der roten Blutkörperchen. Die Verwendung einer mit Hefe-Glucan ergänzten Nahrung ist hilfreich, wenn sie an einer bakteriellen Infektion leiden (Guo et al., 2003; Huff et al., 2006; Zhang et al., 2008; Morales-Lopez et al., 2009). Es hängt jedoch von verschiedenen Faktoren wie der β-Glucan-Quelle (Art und Stamm), Zusammensetzung, Reinheit, Dosierung und der Art des Krankheitserregers ab, mit dem es infiziert ist (Zhang et al., 2008; Cox et al., 2010b).
Hefeglucan zur Reduzierung von Schimmelpilz-Aflatoxinen im Futter
Mit Schimmelpilzen kontaminierte Futtermittel enthalten hohe Mengen an Aflatoxin B1 (AFB1), T-2-Toxin, Zearalenon (ZEA) und einigen anderen Toxinen. Schimmelpilze produzieren Mykotoxine, die die Futterqualität stark beeinträchtigen. Die Langzeitfütterung von Nutztieren und Geflügel, die Aflatoxin B1 (AFB1) enthält, kann zu Leberschäden, verminderter Wachstumsleistung und immunbedingten Reaktionen führen. Die Kontamination mit Mykotoxinen ist ein globales Problem, und ihre Entgiftungs- und Entgiftungsmethoden waren schon immer ein heißes Forschungsthema. Hefeglucan kann durch einen spezifischen Mechanismus die biologische Aktivität von Toxinen im Verdauungstrakt von Tieren reduzieren (Yiannikouis et al., 2004).
Eine Studie zeigt, dass die Wachstumsleistung von Broilern bei niedrigen Dosen von Mykotoxinen in der Nahrung keine offensichtlichen Auswirkungen hat, aber zu einer Schwellung der Leber, des Herzens und der Milz, einer Thymus- und Schleimbeutelatrophie sowie einer Verringerung des Gesamtproteins und Albumins im Serum führen kann und Harnstoffstickstoffkonzentrationen. Die Zugabe von 0,05 % bis 0,15 % Hefeglucan zu schimmeligem Maisfutterzucker hat keine offensichtliche Auswirkung auf die Leistung der Broiler (Tabelle 1), den Organindex (Tabelle 2 und 3) und das Serum im Vergleich zu den Werten der Kontrollgruppe, sie waren jedoch vorhanden Unterschiede zwischen verschiedenen Dosierungen. Die Zugabe von 0,15 % Hefeglucan hat eine erhebliche Wirkung. Eine Studie zeigt, dass Hefeglucan die Konzentration von mit Schimmelpilzen kontaminiertem Mais und dessen Wirkung von Mykotoxinen auf Broiler bis zu einem gewissen Grad reduzieren kann, der Wirkungsmechanismus muss jedoch noch weiter untersucht werden.
Tabelle 1. Auswirkungen von Hefeglucan auf die Wachstumsleistung von Broilern
Projekt | Testzeitraum (d) | Kontrollgruppe | Schimmelige Futtergruppe | Testgruppe I | Testgruppe II | Testgruppe III |
Gewicht (g) | 0 7 14 21 | 85,75 ± 2,36 282,31 ± 11,62 625,20 ± 11,96 1057,33 ± 46,76 | 85,81 ± 3,75 281,14 ± 10,90 621,93 ± 16,25 1059,33 ± 45,43 | 87,11 ± 0,61 283,14 ± 13,04 614,93 ± 32,28 1070,67 ± 64,38 | 86,69 ± 0,62 288,03 ± 6,94 633,60 ± 14,22 1 081,33 ± 38,42 | 86,50 ± 0,84 285,47 ± 6,53 609,97 ± 27,99 1 032,67 ± 50,56 |
Tägliche Gewichtszunahme (g) | 0~7 7~14 14~21 | 28,61 ± 1,11 48,56 ± 0,86 63,28 ± 4,14 | 27,70 ± 1,12 48,51 ± 1,55 61,15 ± 5,28 | 28,51 ± 1,42 48,47 ± 3,73 66,66 ± 3,65 | 28,93 ± 0,82 49,39 ± 1,47 64,78 ± 2,91 | 28,72 ± 0,57 48,68 ± 1,63 62,84 ± 1,51 |
Tägliche Futteraufnahme (g) | 0~7 7~14 14~21 | 41,11 ± 2,01 76,24 ± 4,16 121,43 ± 7,02 | 41,21 ± 2,46 76,94 ± 3,31 123,39 ± 6,99 | 42,87 ± 2,71 77,27 ± 5,88 124,13 ± 8,82 | 43,15 ± 2,77 76,46 ± 1,16 125,18 ± 4,49 | 42,10 ± 3,10 75,94 ± 3,11 123,87 ± 5,60 |
Verhältnis von Material zu Gewicht | 0~7 7~14 14~21 | 1,44 ± 0,08 1,57 ± 0,09 1,92 ± 0,19 | 1,49 ± 0,14 1,59 ± 0,05 2,03 ± 0,18 | 1,50 ± 0,09 1,59 ± 0,04 1,86 ± 0,14 | 1,49 ± 0,09 1,55 ± 0,06 1,94 ± 0,11 | 1,47 ± 0,12 1,56 ± 0,04 1,97 ± 0,11 |
Hinweis: Unterschiedliche Kleinbuchstaben auf den Rändern derselben Zeile weisen auf einen signifikanten Unterschied hin (S<0.05) und der gleiche Buchstabe oder kein Buchstabe weist auf keinen signifikanten Unterschied hin (P>0.05). Die folgende Tabelle ist dieselbe.
Tabelle 2. Die Wirkung von Hefeglucan auf das relative Gewicht von Broiler-Hühnerorganen (g/kg)
Projekt | Testzeitraum (d) | Kontrollgruppe | Schimmelige Futtergruppe | Testgruppe I | Testgruppe II | Testgruppe III |
Leber | 7 21 | 33,52 ± 0,83a 23,56 ± 1,69a | 38,17 ± 2,56b 26,50 ± 2,41b | 34,78 ± 1,95a 22,05 ± 1,37a | 34,95 ± 3,29a 22,99 ± 3,14a | 32,77 ± 2,57a 21,29 ± 1,92a |
Niere | 7 21 | 9,45 ± 1,00abc 7,33 ± 0,77 | 10,78 ± 1,32 c 7,84 ± 0,53 | 9,12 ± 0,56ab 7,58 ± 0,83 | 10,22 ± 0,81 v. Chr 7,26 ± 0,72 | 8,50 ± 1,49a 7,31 ± 0,76 |
Herz | 7 21 | 8,35 ± 1,48 6,23 ± 0,40 a | 8,76 ± 0,99 7,27 ± 0,78 b | 8,17 ± 0,79 6,68 ± 0,34ab | 8,10 ± 0,84 6,13 ± 0,88a | 8,22 ± 0,18 6,09 ± 0,33a |
Pankreas | 7 21 | 3,53 ± 0,10 2,11 ± 0,20 | 3,58 ± 0,24 2,32 ± 0,21 | 3,50 ± 0,37 2,19 ± 0,23 | 3,57 ± 0,18 2,24 ± 0,12 | 3,62 ± 0,38 2,18 ± 0,22 |
Tabelle 3. Die Wirkung von Hefeglucan auf das relative Gewicht der Immunorgane bei Broilern (g/kg)
Projekt | Testzeitraum (d) | Kontrollgruppe | Schimmelige Futtergruppe | Testgruppe I | Testgruppe II | Testgruppe III |
Milz | 7 21 | 0.69±0.09a 00,81 ± 0,12 | 0.95±0.18b 00,94 ± 0,14 | 0.71±0.13a 00,84 ± 0,17 | 0.71±0,12a 0.85±0,22 | 0.62±0.08a 0.85±0,27 |
Thymusdrüse | 7 21 | 3,92 ± 0,77 4,46 ± 0,70 | 3,74 ± 0,33 4,07 ± 0,52 | 3,50 ± 0,35 4,31 ± 0,65 | 4,51 ± 0,60 4,33 ± 0,61 | 4,12 ± 0,87 4,22 ± 0,88 |
Bursa von Fabricius | 7 21 | 2,01 ± 0,30 2,56 ± 0,43ab | 1,75 ± 0,34 2,01 ± 0,35a | 2,00 ± 0,28 2,33 ± 0,66ab | 2,25 ± 0,51 2,71 ± 0,83ab | 2,16 ± 0,33 3,23 ± 1,06b |
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Verweise
Anwar, M. I., F. Muhammad, M. M. Awais und M. Akhtar. “Eine Übersicht über β-Glucane als Wachstumsförderer und Antibiotika-Alternative gegen Darmpathogene bei Geflügel.” World’s Poultry Science Journal 73, Nr. 3 (2017): 651-661.
Cox, C. M., Sumners, L. H., Kim, S., McElroy, A. P., Bedford, M. R., & Dalloul, RA (2010). Immunreaktionen auf β-Glucan aus der Nahrung bei Broilerküken während einer Eimeria-Provokation.Geflügelwissenschaft,89(12), 2597-2607.
Ding, B.; Zheng, J.; Wang, X.; Zhang, L.; Sonne; Xing, Q.; Pirone, A.; Fronte, B. Auswirkungen von Betaβ-1,3-1,6-Glucan aus Nahrungshefe auf die Wachstumsleistung, die Darmmorphologie und ausgewählte Immunitätsparameteränderungen bei Haidong-Küken.Asiatisch-Australischer J. Anim. Wissenschaft. 2019,32, 1558.
Guo, P.; Thomas, J.D.; Bruce, M.P.; Hinton, T.M.; Bean, A.G.; Lowenthal, J.W. Die TH1-Reaktion von Hühnern: Mögliche therapeutische Anwendungen von ChIFN-gamma.Entwickler Komp. Immunol. 2013,41, 389–396.
Guo, Y., Ali, R. A., & Qureshi, MA (2003). Der Einfluss von β-Glucan auf die Immunantwort bei Broilerküken.Immunpharmakologie und Immuntoxikologie,25(3), 461-472.
Guo, Y.; Ali, R.A.; Qureshi, M.A. Der Einfluss von Betaβ-Glucan auf die Immunantwort bei Broilerküken.Immunpharmakol. Immuntoxin. 2003,25, 461–472.
Huff, G. R., Huff, W. E., Rath, N., & Tellez, G. (2006). Eine begrenzte Behandlung mit β-1, 3/1, 6-Glucan verbessert die Produktionswerte von Masthühnern, die mit Escherichia coli infiziert sind.Geflügelwissenschaft,85(4), 613-618.
Lowry, V.K.; Farnell, M.B.; Ferro, P.J.; Swaggerty, C.L.; Bahl, A.; Kogut, M.H. Gereinigtes Betaβ-Glucan reguliert als abiotischer Futterzusatz die angeborene Immunantwort bei unreifen Hühnern gegen Salmonella enterica, Serovar Enteritidis.Int. J. Lebensmittelmikrobiol. 2005,98, 309–318.
Moon, S.H.; Lee, ich.; Feng, X.; Lee, H.Y.; Kim, J.; Ahn, D.U. Einfluss von BetaΒ-Glucan aus der Nahrung auf die Leistung von Broilern und die Qualität des Brustfleisches von Broilern.Asiatisch - Australisch. J. Anim. Wissenschaft. 2016,29, 384–389.
Morales-López, R., Auclair, E., Garcia, F., Esteve-Garcia, E., & Brufau, J. (2009). Verwendung von Hefezellwänden; β-1, 3/1, 6-Glucane; und Mannoproteine in der Ernährung von Broilerhühnern. Geflügelwissenschaft, 88(3), 601-607.
Rajapakse, J.R.; Buddhika, M.D.; Nagataki, M.; Nomura, H.; Watanabe, Y.; Ikeue, Y.; Agatsuma, T. Wirkung von Sophy Betaβ-Glucan auf Immunität und Wachstumsleistung bei Masthühnern. J. Tierarzt. Med. Wissenschaft. 2010, 72, 1629–1632.
Stier, H.; Ebbeskotte, V.; Gruenwald, J. Immunmodulatorische Wirkungen von Hefe-BetaΒ-1,3/1,6-D-Glucan aus der Nahrung. Nutr. J. 2014, 13, 38.
Vetvicka, V.; Vetvickova, J. Natürliche Immunmodulatoren und ihre Stimulierung der Immunreaktion: Richtig oder falsch?Antikrebs. Res. 2014,34, 2275–2282.
Yiannikouis A, Francois J, Poughon L. Alkaliextraktion von β-D-Glucanen aus der Zellwand von Saccharomyces cerevisiae und Untersuchung ihrer Adsorptionseigenschaften gegenüber Zearalenon [J]. J. Agrar. Food Chem., 2004, 52: 3666-3673.
Zhang, B., Guo, Y., & Wang, Z. (2008). Die modulierende Wirkung der 棺-1, 3/1, 6-Glucan-Supplementierung in der Ernährung auf die Leistung und die immunologischen Reaktionen von Masthühnern.Asiatisch-Australasiatische Zeitschrift für Tierwissenschaften,21(2), 237-244.
Eine Antwort
Guter Eintrag. Ich stehe vor einigen dieser Probleme.